The importance of 12R-lipoxygenase and transglutaminase activities in the hydration-dependent ex vivo maturation of corneocyte envelopes.


Journal

International journal of cosmetic science
ISSN: 1468-2494
Titre abrégé: Int J Cosmet Sci
Pays: England
ID NLM: 8007161

Informations de publication

Date de publication:
Dec 2019
Historique:
received: 26 06 2019
accepted: 18 08 2019
pubmed: 21 8 2019
medline: 6 5 2020
entrez: 21 8 2019
Statut: ppublish

Résumé

Terminally differentiated keratinocytes acquire corneocyte protein envelopes (CPE) complexed with corneocyte lipid envelopes (CLE). These two structural components of the corneocyte envelopes (CEs) undergo maturation by gaining in hydrophobicity, rigidity and surface area. Linoleoyl acylceramides are processed by 12R-lipoxygenase (12R-LOX) and other enzymes before transglutaminase (TG) attaches ω-hydroxyceramides to involucrin in the CPE. Concurrently, structural proteins are cross-linked by TG that has been activated by cathepsin D (CathD). The primary aim of this work was to demonstrate the impact of relative humidity (RH) during ex vivo CE maturation. Low, optimal and high RH were selected to investigate the effect of protease inhibitors (PIs) on CE maturation and TG activity; in addition, 12R-LOX and CathD activity were measured at optimal RH. Finally, the effect of glycerol on ex vivo CE maturation was tested at low, optimal and high RH. The first and ninth tape strip of photo-exposed (PE) cheek and photo-protected (PP) post-auricular sites of healthy volunteers were selected. Ex vivo CE maturation was assessed via the relative CE maturity (RCEM) approach based on CE rigidity and hydrophobicity. The second and eighth tapes were exposed to RH in the presence of inhibitors. Irrespective of tape stripping depth, CEs from PE samples attained CE rigidity to the same extent as mature CEs from the PP site, but such improvement was lacking for CE hydrophobicity. 70% RH was optimal for ex vivo CE maturation. The inhibition of 12R-LOX activity resulted in enhanced CE rigidity which was reduced by the TG inhibitor. CE hydrophobicity remained unchanged during ex vivo maturation in the presence of TG or 12R-LOX inhibition. CE hydrophobicity was enhanced in the presence of glycerol at 44% RH and 100% RH but not at 70% RH. Furthermore, TG activity was significantly diminished at 100% RH compared to the commercial inhibitor LDN-27219. However, a protease inhibitor mix reversed the negative effect of overhydration. The study adds to the understanding of the roles of 12R-LOX and TG activity in CE maturation and gives further insight into the effect of glycerol on the SC. Les kératinocytes à différenciation terminale acquièrent les enveloppes protéiniques des cornéocytes (ECP) complexées aux enveloppes lipidiques des cornéocytes (ELC). Ces deux composants structurels des enveloppes cornéocytaires (EC) subissent un processus de maturation en gagnant en hydrophobicité, en rigidité et en surface. Les linoléoyl-acyle-céramides sont traités par 12R-lipoxygénase (12R-LOX) et d’autres enzymes avant que la transglutaminase (TG) ne fixe les x-hydroxy-céramides à l’involucrine dans les ECP. Les protéines structurelles sont simultanément réticulées par la TG qui a été activée par la cathepsine D (CathD). L’objectif principal de ces travaux visait à démontrer l’impact de l’humidité relative (HR) pendant la maturation de l’EC ex vivo. Des humidités relatives faible, optimale et élevée ont été retenues pour étudier l’effet des inhibiteurs de la protéase (IP) sur la maturation de l’EC et l’activité de la TG ; l’activité de CathD et 12R-LOX a également été mesurée à une HR optimale. Finalement, l’effet du glycérol sur la maturation de l’EC ex vivo a été testé à des humidités relatives faible, optimale et élevée. MÉTHODES: La première et neuvième bandes adhésives sur un site à l’arrière de l’oreille protégé de la lumière (photo-protégé, PP) et sur une joue exposée à la lumière (photo-exposée, PE) de volontaires sains ont été sélectionnées. La maturation de l’EC ex vivo a été évaluée par l’approche de la maturité relative d’EC (RCEM) reposant sur l’hydrophobicité et la rigidité de l’EC. Les deuxième et huitième bandes ont été exposées à l’humidité relative en présence d’inhibiteurs. RÉSULTATS: Indépendamment de la profondeur de bande adhésive, les EC des échantillons EP ont atteint la rigidité d’EC de la même manière que les EC matures du site PP, mais ces améliorations faisaient défaut en ce qui concerne l’hydrophobicité des EC. Une HR à 70 % était optimale pour la maturation de l’EC ex vivo. L’inhibition de l’activité du 12R-LOX a entraîné une rigidité accrue de l’EC, laquelle était réduite par l’inhibiteur de la TG. L’hydrophobicité des EC est restée inchangée pendant la maturation ex vivo en présence de l’inhibition de la TG ou du 12R-LOX. L’hydrophobicité des EC a été améliorée en présence de glycérol à une HR de 44 % et à une HR de 100 %, mais non à une HR de 70 %. L’activité de la TG a par ailleurs significativement diminué à une HR de 100 % par rapport à l’inhibiteur commercial LDN-27219. Cependant, un mélange inhibiteur de la protéase a inversé l’effet négatif de la surhydratation. L’étude renforce la compréhension des rôles de l’activité de la TG et du 12R-LOX dans la maturation de l’EC et donne de plus amples détails sur l’effet du glycérol sur la couche cornée (stratum corneum, SC).

Sections du résumé

BACKGROUND BACKGROUND
Terminally differentiated keratinocytes acquire corneocyte protein envelopes (CPE) complexed with corneocyte lipid envelopes (CLE). These two structural components of the corneocyte envelopes (CEs) undergo maturation by gaining in hydrophobicity, rigidity and surface area. Linoleoyl acylceramides are processed by 12R-lipoxygenase (12R-LOX) and other enzymes before transglutaminase (TG) attaches ω-hydroxyceramides to involucrin in the CPE. Concurrently, structural proteins are cross-linked by TG that has been activated by cathepsin D (CathD).
OBJECTIVES OBJECTIVE
The primary aim of this work was to demonstrate the impact of relative humidity (RH) during ex vivo CE maturation. Low, optimal and high RH were selected to investigate the effect of protease inhibitors (PIs) on CE maturation and TG activity; in addition, 12R-LOX and CathD activity were measured at optimal RH. Finally, the effect of glycerol on ex vivo CE maturation was tested at low, optimal and high RH.
METHODS METHODS
The first and ninth tape strip of photo-exposed (PE) cheek and photo-protected (PP) post-auricular sites of healthy volunteers were selected. Ex vivo CE maturation was assessed via the relative CE maturity (RCEM) approach based on CE rigidity and hydrophobicity. The second and eighth tapes were exposed to RH in the presence of inhibitors.
RESULTS RESULTS
Irrespective of tape stripping depth, CEs from PE samples attained CE rigidity to the same extent as mature CEs from the PP site, but such improvement was lacking for CE hydrophobicity. 70% RH was optimal for ex vivo CE maturation. The inhibition of 12R-LOX activity resulted in enhanced CE rigidity which was reduced by the TG inhibitor. CE hydrophobicity remained unchanged during ex vivo maturation in the presence of TG or 12R-LOX inhibition. CE hydrophobicity was enhanced in the presence of glycerol at 44% RH and 100% RH but not at 70% RH. Furthermore, TG activity was significantly diminished at 100% RH compared to the commercial inhibitor LDN-27219. However, a protease inhibitor mix reversed the negative effect of overhydration.
CONCLUSION CONCLUSIONS
The study adds to the understanding of the roles of 12R-LOX and TG activity in CE maturation and gives further insight into the effect of glycerol on the SC.
CONTEXTE BACKGROUND
Les kératinocytes à différenciation terminale acquièrent les enveloppes protéiniques des cornéocytes (ECP) complexées aux enveloppes lipidiques des cornéocytes (ELC). Ces deux composants structurels des enveloppes cornéocytaires (EC) subissent un processus de maturation en gagnant en hydrophobicité, en rigidité et en surface. Les linoléoyl-acyle-céramides sont traités par 12R-lipoxygénase (12R-LOX) et d’autres enzymes avant que la transglutaminase (TG) ne fixe les x-hydroxy-céramides à l’involucrine dans les ECP. Les protéines structurelles sont simultanément réticulées par la TG qui a été activée par la cathepsine D (CathD).
OBJECTIFS OBJECTIVE
L’objectif principal de ces travaux visait à démontrer l’impact de l’humidité relative (HR) pendant la maturation de l’EC ex vivo. Des humidités relatives faible, optimale et élevée ont été retenues pour étudier l’effet des inhibiteurs de la protéase (IP) sur la maturation de l’EC et l’activité de la TG ; l’activité de CathD et 12R-LOX a également été mesurée à une HR optimale. Finalement, l’effet du glycérol sur la maturation de l’EC ex vivo a été testé à des humidités relatives faible, optimale et élevée. MÉTHODES: La première et neuvième bandes adhésives sur un site à l’arrière de l’oreille protégé de la lumière (photo-protégé, PP) et sur une joue exposée à la lumière (photo-exposée, PE) de volontaires sains ont été sélectionnées. La maturation de l’EC ex vivo a été évaluée par l’approche de la maturité relative d’EC (RCEM) reposant sur l’hydrophobicité et la rigidité de l’EC. Les deuxième et huitième bandes ont été exposées à l’humidité relative en présence d’inhibiteurs. RÉSULTATS: Indépendamment de la profondeur de bande adhésive, les EC des échantillons EP ont atteint la rigidité d’EC de la même manière que les EC matures du site PP, mais ces améliorations faisaient défaut en ce qui concerne l’hydrophobicité des EC. Une HR à 70 % était optimale pour la maturation de l’EC ex vivo. L’inhibition de l’activité du 12R-LOX a entraîné une rigidité accrue de l’EC, laquelle était réduite par l’inhibiteur de la TG. L’hydrophobicité des EC est restée inchangée pendant la maturation ex vivo en présence de l’inhibition de la TG ou du 12R-LOX. L’hydrophobicité des EC a été améliorée en présence de glycérol à une HR de 44 % et à une HR de 100 %, mais non à une HR de 70 %. L’activité de la TG a par ailleurs significativement diminué à une HR de 100 % par rapport à l’inhibiteur commercial LDN-27219. Cependant, un mélange inhibiteur de la protéase a inversé l’effet négatif de la surhydratation.
CONCLUSION CONCLUSIONS
L’étude renforce la compréhension des rôles de l’activité de la TG et du 12R-LOX dans la maturation de l’EC et donne de plus amples détails sur l’effet du glycérol sur la couche cornée (stratum corneum, SC).

Autres résumés

Type: Publisher (fre)
Les kératinocytes à différenciation terminale acquièrent les enveloppes protéiniques des cornéocytes (ECP) complexées aux enveloppes lipidiques des cornéocytes (ELC). Ces deux composants structurels des enveloppes cornéocytaires (EC) subissent un processus de maturation en gagnant en hydrophobicité, en rigidité et en surface. Les linoléoyl-acyle-céramides sont traités par 12R-lipoxygénase (12R-LOX) et d’autres enzymes avant que la transglutaminase (TG) ne fixe les x-hydroxy-céramides à l’involucrine dans les ECP. Les protéines structurelles sont simultanément réticulées par la TG qui a été activée par la cathepsine D (CathD).

Identifiants

pubmed: 31429091
doi: 10.1111/ics.12574
pmc: PMC6899781
doi:

Substances chimiques

Arachidonate 12-Lipoxygenase EC 1.13.11.31
Transglutaminases EC 2.3.2.13

Types de publication

Journal Article

Langues

eng

Sous-ensembles de citation

IM

Pagination

563-578

Informations de copyright

© 2019 The Authors. International Journal of Cosmetic Science published by John Wiley & Sons Ltd on behalf of Society of Cosmetic Scientists and Société Française de Cosmétologie.

Références

J Invest Dermatol. 2001 Jul;117(1):44-51
pubmed: 11442748
J Eur Acad Dermatol Venereol. 2016 Feb;30(2):223-49
pubmed: 26449379
Analyst. 2013 Nov 7;138(21):6582-8
pubmed: 23951566
Dev Biol. 1986 May;115(1):84-92
pubmed: 3516761
Int J Cosmet Sci. 2003 Aug;25(4):157-67
pubmed: 18494897
Anal Biochem. 1992 Aug 15;205(1):166-71
pubmed: 1359806
J Invest Dermatol. 2004 Oct;123(4):715-32
pubmed: 15373777
Chem Phys Lipids. 1998 Feb;91(2):85-96
pubmed: 9569614
Exp Dermatol. 2002 Jun;11(3):248-56
pubmed: 12102664
J Invest Dermatol. 1994 Nov;103(5):731-41
pubmed: 7963664
Int Arch Occup Environ Health. 1993;65(1 Suppl):S223-5
pubmed: 8406931
Br J Dermatol. 2008 Jul;159(1):23-34
pubmed: 18510666
J Cell Biol. 2007 Apr 9;177(1):173-82
pubmed: 17403930
Arch Dermatol Res. 2005 Apr;296(10):489-95
pubmed: 15750803
Biochem Biophys Res Commun. 2005 Dec 9;338(1):93-101
pubmed: 16168952
J Pediatr. 2006 May;148(5):613-7
pubmed: 16737871
Hum Mol Genet. 2002 Jan 1;11(1):107-13
pubmed: 11773004
Br J Dermatol. 2007 Feb;156(2):231-40
pubmed: 17223861
Int J Cosmet Sci. 2019 Jun;41(3):274-280
pubmed: 30993698
Int J Cosmet Sci. 2018 Mar 23;:null
pubmed: 29572869
J Cosmet Sci. 2013 May-Jun;64(3):165-74
pubmed: 23752031
Br J Dermatol. 2014 Sep;171 Suppl 3:19-28
pubmed: 25234174
Arch Dermatol Res. 2000 Sep;292(9):463-8
pubmed: 11000290
Br J Dermatol. 1998 Feb;138(2):266-72
pubmed: 9602872
J Dermatol Sci. 2017 May;86(2):106-113
pubmed: 28242341
J Invest Dermatol. 2008 Feb;128(2):378-88
pubmed: 17671517
Arch Dermatol Res. 1995;287(5):457-64
pubmed: 7625857
Nat Rev Mol Cell Biol. 2005 Apr;6(4):328-40
pubmed: 15803139
Int J Cosmet Sci. 2007 Jun;29(3):191-200
pubmed: 18489349
Hum Mutat. 2005 Oct;26(4):351-61
pubmed: 16116617
Proc Natl Acad Sci U S A. 1999 Jul 20;96(15):8402-7
pubmed: 10411887
J Invest Dermatol. 1989 Jul;93(1):169-72
pubmed: 2746002
J Invest Dermatol. 1988 Jul;91(1):11-5
pubmed: 2455000
Cell Tissue Res. 2013 Feb;351(2):217-35
pubmed: 23053051
Biophys J. 1996 Nov;71(5):2692-700
pubmed: 8913606
Eur J Pharm Biopharm. 2012 Sep;82(1):171-4
pubmed: 22713518
J Dermatol Sci. 2010 Aug;59(2):123-8
pubmed: 20654785
J Dermatol Sci. 2003 Feb;31(1):29-35
pubmed: 12615361
Int J Cosmet Sci. 2011 Dec;33(6):560-5
pubmed: 21699549
Int J Cosmet Sci. 2003 Oct;25(5):245-57
pubmed: 18494907
Int J Cosmet Sci. 2017 Dec;39(6):637-652
pubmed: 28865110
Arch Dermatol Res. 1994;286(5):249-53
pubmed: 7520224
J Invest Dermatol. 1998 Nov;111(5):858-63
pubmed: 9804350

Auteurs

D Guneri (D)

UCL School of Pharmacy, 29-39 Brunswick Square, WC1N 1AX, London, UK.

R Voegeli (R)

DSM Nutritional Products Ltd., Wurmisweg 576, 4303, Kaiseraugust, Switzerland.

S Doppler (S)

DSM Nutritional Products Ltd., Wurmisweg 576, 4303, Kaiseraugust, Switzerland.

C Zhang (C)

UCL School of Pharmacy, 29-39 Brunswick Square, WC1N 1AX, London, UK.

A L Bankousli (AL)

UCL School of Pharmacy, 29-39 Brunswick Square, WC1N 1AX, London, UK.

M R Munday (MR)

UCL School of Pharmacy, 29-39 Brunswick Square, WC1N 1AX, London, UK.

M E Lane (ME)

UCL School of Pharmacy, 29-39 Brunswick Square, WC1N 1AX, London, UK.

A V Rawlings (AV)

UCL School of Pharmacy, 29-39 Brunswick Square, WC1N 1AX, London, UK.
AVR Consulting Limited, 26 Shavington Way, CW98FH, Northwich, UK.

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