Multiplication of Cupressus guadalupensis Using the RITA

Asexual reproduction Organogenesis Plant tissue culture Temporary immersion systems

Journal

Methods in molecular biology (Clifton, N.J.)
ISSN: 1940-6029
Titre abrégé: Methods Mol Biol
Pays: United States
ID NLM: 9214969

Informations de publication

Date de publication:
2024
Historique:
medline: 29 1 2024
pubmed: 29 1 2024
entrez: 29 1 2024
Statut: ppublish

Résumé

The Guadalupe cypress (Cupressus guadalupensis S. Watson) is an endangered species included in the list of the NOM-059-SEMARNAT-2010. The presence of wild goats in the habitat has been the greatest threat to the propagation and survival of this species. Therefore, there is a need to generate propagation protocols that facilitate the regeneration of the species. Plant tissue culture offers various possibilities that can facilitate the regeneration of species under some risk. Temporary immersion systems have proven to be an option with various advantages in plant tissue culture, such as increasing the number of seedlings generated and reducing production times, compared to semisolid media. The objective of this chapter is to describe a protocol to propagate Guadalupe cypress tissues in a RITA

Identifiants

pubmed: 38285151
doi: 10.1007/978-1-0716-3654-1_18
doi:

Types de publication

Journal Article

Langues

eng

Sous-ensembles de citation

IM

Pagination

193-198

Informations de copyright

© 2024. The Author(s), under exclusive license to Springer Science+Business Media, LLC, part of Springer Nature.

Références

Farjon A (2010) A handbook of the world’s conifers. Brill, London
doi: 10.1163/9789047430629
SEMARNAT (2010) Norma Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2010, Protección ambiental-Especies nativas de México de flora y fauna silvestres-Categorías de riesgo y especificaciones para su inclusión, exclusión o cambio-Lista de especies en riesgo. SEMARNAT, CDMX
Mroginski L, Roca W (1991) Establecimiento de cultivos de tejidos vegetales in vitro. In: Roca WM, Mroginski LA (eds) Cultivo de tejidos en la agricultura. Fundamentos y aplicaciones. CIAT, Cali
González N (2018) Mejora de protocolos de regeneración por embriogénesis somática en pino piñonero. Doctoral dissertation, Agronomica
Ocampo F, Núñez V (2007) Propagación in vitro de Psidium guajaba mediante organogénesis directa a partir de segmentos nodales. Cienc Tecnol Agropecu 8:22–27
doi: 10.21930/rcta.vol8_num1_art:79
Cesty C, Saenz E, Pereira G (2007) Micropropagación de Pothomorphe umbellata (L.) Miq. vía organogénesis directa. Rev Cubana Plant Med 12:1–12
Rodríguez M, Latsague M, Chacón M, Astorga P (2014) Inducción in vitro de callogénesis y organogénesis indirecta a partir de explantes de cotiledón, hipocótilo y hoja en Ugni molinae. Bosque (Valdivia) 35:111–118
Reyes S, Lecona C, Barredo F, Calderón J, Abud M, Rincón-Rosales R, Gutiérrez-Miceli FA (2016) Plant growth regulators optimization for maximize shoots number in Agave americana L. by indirect organogenesis. Gayana Bot 73:124–131
doi: 10.4067/S0717-66432016000100014
Del Rivero N, Quiala E, Agramante D, Barbón R, Camacho W, Morejón L, Pérez M (2004) Empleo de sistemas de inmersión temporal para la multiplicación in vitro de brotes de Anthurium andraeanum Lind. var. Lambada. Biotecnol Veg 4:2
Ramírez J, Zúñiga T (2019) Multiplicación in vitro de Zingiber officinale Roscoe cv. “Gran Caimán” en Sistema de Inmersión Temporal. Biotecnol Veg 19:297–306
Chávez J, Andrade M, Juárez P, Villegas O, Sotelo H, Perdomo F (2018) Evaluación de tres sistemas de cultivo in vitro para la multiplicación de microcormos de gladiolo. Rev Fitotec Mex 41:551–554
Lloyd G, McCown B (1981) Woody plant medium: a mineral nutrient formulation for microculture of woody plant species. HortScience 16:453

Auteurs

Luis Alberto Gómez-Reyes (LA)

Laboratorio Agrícola-Forestal, Centro Nacional de Recursos Genéticos, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), Tepatitlan de Morelos, Jalisco, Mexico.

Esmeralda Judith Cruz-Gutiérrez (EJ)

Laboratorio Agrícola-Forestal, Centro Nacional de Recursos Genéticos, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), Tepatitlan de Morelos, Jalisco, Mexico. cruz.esmeralda@inifap.gob.mx.

Lorena Jacqueline Gómez-Godínez (LJ)

Laboratorio Agrícola-Forestal, Centro Nacional de Recursos Genéticos, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), Tepatitlan de Morelos, Jalisco, Mexico.

Manuel de Jesús Bermúdez-Guzmán (MJ)

Laboratorio de Biotecnología, Campo Experimental Tecomán, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), Tecoman, Colima, Mexico.

Claudia Berenice Espitia-Flores (CB)

Posgrado de Biociencias, Universidad de Guadalajara - Centro Universitario Los Altos, Tepatitlan de Morelos, Jalisco, Mexico.

Juan Manuel Pichardo González (JMP)

Laboratorio Agrícola-Forestal, Centro Nacional de Recursos Genéticos, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), Tepatitlan de Morelos, Jalisco, Mexico.

Classifications MeSH