Effect of regioisomers of hydroxystearic acids as peroxisomal proliferator-activated receptor agonists to boost the anti-ageing potential of retinoids.
PPAR
collagen
hydroxystearic acid
proteomics
skin physiology/structure
Journal
International journal of cosmetic science
ISSN: 1468-2494
Titre abrégé: Int J Cosmet Sci
Pays: England
ID NLM: 8007161
Informations de publication
Date de publication:
Oct 2021
Oct 2021
Historique:
revised:
13
08
2021
received:
09
07
2021
accepted:
15
08
2021
pubmed:
18
8
2021
medline:
1
2
2022
entrez:
17
8
2021
Statut:
ppublish
Résumé
We report on the in vitro and ex vivo effects of chiral (R)-10-hydroxystearic acid (10-HSA) compared with other mono-hydroxystearic acid regioisomers and stearic acid (SA) together with its benefit when combined with retinol. Following treatment with hydroxystearic acids peroxisomal proliferator-activated receptor alpha (PPARα) activity was determined in a luciferase reporter gene assay, collagen type I was assessed in primary human dermal fibroblasts by immunohistochemistry, modification of the intracellular fibroblast collagen proteome was studied by mass-spectrometry-based proteomics and collagen type III was assessed by immunohistochemistry on human ex vivo skin. 10-HSA was the most effective PPARα agonist (15.7× induction; p < 0.001), followed by 9-HSA (10.1× induction) and then 12-HSA (4.9× induction) with 17-HSA (1.7× induction) being similar to the effects of stearic acid (1.8× induction). Collagen type I levels were increased in primary human fibroblasts by 2.12× and 1.56× for 10-HSA and 9-HSA, respectively, in vitro with the10-HSA being significant (p < 0.05), whereas 12-HSA and SA had no statistical effect over the untreated control. 10-HSA and 12-HSA modified the intracellular fibroblast collagen proteome slightly with significant increases in collagen alpha-1 (VI) and alpha-3 (VI) proteins but only 10-HSA increased levels of collagen alpha-2 (V), alpha-1 (III), alpha-1 (I) and alpha-2 (I) (all p < 0.05) with the increases being significantly different between 10-HSA and 12-HSA for collagen alpha-1 (I), collagen-3 (VI) and collagen alpha-2 (I) (p < 0.01). Collagen type III in ex vivo skin was increased +47% (p < 0.05) by 0.05% (1.7 mM) retinol, +70% (p < 0.01) by 0.01% (0.33 mM) 10-HSA and the combination increased levels by +240% (p < 0.01 for either ingredient). Chiral (R)-10-HSA has been shown to be superior to 9, 12 and 17-HSA as a PPARα agonist. Moreover, 10-HSA stimulated collagen synthesis in monolayer fibroblast culture as assessed by proteomics and immunohistochemically. Furthermore, we also show the synergistic effects of 10-HSA with retinol on collagen III synthesis in skin explants. These results further highlight the efficacy of 10-HSA as a cosmetically acceptable PPARα agonist and anti-ageing ingredient. Nous rapportons les effets in vitro et ex vivo de l'acide chiral (R)-10-hydroxystéarique (10-HSA) par rapport à d'autres régioisomères d'acide mono-hydroxystéarique et à l'acide stéarique (SA) ainsi que ses avantages lorsqu'il est associé au rétinol. MÉTHODES: Après un traitement avec des acides hydroxystéariques, l'activité du récepteur alpha activé par les proliférateurs peroxysomaux (PPARα) a été déterminée dans un test du gène rapporteur de la luciférase, le collagène de type I a été évalué dans les fibroblastes dermiques humains primaires par immunohistochimie, la modification du protéome du collagène des fibroblastes intracellulaires a été étudiée par spectrométrie de masse. La protéomique et le collagène de type III ont été évalués par immunohistochimie sur la peau humaine ex vivo. RÉSULTATS: la 10-HSA était l'agoniste PPARα le plus efficace (induction 15,7X ; p<0,001), suivi de la 9-HSA (induction 10,1X) puis de la 12-HSA (induction 4,9X) avec la 17-HSA (induction 1,7X) étant similaire aux effets de l'acide stéarique (induction 1,8X). Les niveaux de collagène de type I ont été augmentés dans les fibroblastes humains primaires de 2,12X et 1,56X pour la 10-HSA et la 9-HSA respectivement in vitro, la 10-HSA étant significative (p<0,05) : alors que la 12-HSA et la SA n'ont eu aucun effet statistique sur le témoin non traité. La 10-HSA et la 12-HSA ont légèrement modifié le protéome du collagène des fibroblastes intracellulaires avec des augmentations significatives des protéines de collagène alpha-1 (VI) et alpha-3 (VI), mais seule la 10-HSA a augmenté les niveaux de collagène alpha-2 (V), alpha -1 (III), alpha-1 (I) et alpha-2 (I) (tous p<0,05) avec des augmentations significativement différentes entre 10-HSA et 12-HSA pour le collagène alpha-1 (I), le collagène- 3 (VI) et Collagène alpha-2 (I) (p<0,01). Le collagène de type III dans la peau ex vivo a augmenté de +47 % (p<0,05) de 0,05 % (1,7 mM) de rétinol, de +70 % (p<0,01) de 0,01 % (0,33 mM) de 10-HSA et la combinaison a augmenté les niveaux de +240 % (p<0,01 pour chaque ingrédient). La chiral (R)-10-HSA s'est avérée supérieure à 9, 12 et 17-HSA en tant qu'agoniste de PPARα. De plus, la 10-HSA a stimulé la synthèse de collagène dans la culture de fibroblastes monocouche telle qu'évaluée par protéomique et immunohistochimique. De plus, nous montrons également les effets synergiques de la 10-HSA avec le rétinol sur la synthèse du collagène III dans les explants de peau. Ces résultats soulignent en outre l'efficacité de la 10-HSA en tant qu'agoniste de PPARα et ingrédient anti-âge cosmétiquement acceptable.
Autres résumés
Type: Publisher
(fre)
Nous rapportons les effets in vitro et ex vivo de l'acide chiral (R)-10-hydroxystéarique (10-HSA) par rapport à d'autres régioisomères d'acide mono-hydroxystéarique et à l'acide stéarique (SA) ainsi que ses avantages lorsqu'il est associé au rétinol. MÉTHODES: Après un traitement avec des acides hydroxystéariques, l'activité du récepteur alpha activé par les proliférateurs peroxysomaux (PPARα) a été déterminée dans un test du gène rapporteur de la luciférase, le collagène de type I a été évalué dans les fibroblastes dermiques humains primaires par immunohistochimie, la modification du protéome du collagène des fibroblastes intracellulaires a été étudiée par spectrométrie de masse. La protéomique et le collagène de type III ont été évalués par immunohistochimie sur la peau humaine ex vivo. RÉSULTATS: la 10-HSA était l'agoniste PPARα le plus efficace (induction 15,7X ; p<0,001), suivi de la 9-HSA (induction 10,1X) puis de la 12-HSA (induction 4,9X) avec la 17-HSA (induction 1,7X) étant similaire aux effets de l'acide stéarique (induction 1,8X). Les niveaux de collagène de type I ont été augmentés dans les fibroblastes humains primaires de 2,12X et 1,56X pour la 10-HSA et la 9-HSA respectivement in vitro, la 10-HSA étant significative (p<0,05) : alors que la 12-HSA et la SA n'ont eu aucun effet statistique sur le témoin non traité. La 10-HSA et la 12-HSA ont légèrement modifié le protéome du collagène des fibroblastes intracellulaires avec des augmentations significatives des protéines de collagène alpha-1 (VI) et alpha-3 (VI), mais seule la 10-HSA a augmenté les niveaux de collagène alpha-2 (V), alpha -1 (III), alpha-1 (I) et alpha-2 (I) (tous p<0,05) avec des augmentations significativement différentes entre 10-HSA et 12-HSA pour le collagène alpha-1 (I), le collagène- 3 (VI) et Collagène alpha-2 (I) (p<0,01). Le collagène de type III dans la peau ex vivo a augmenté de +47 % (p<0,05) de 0,05 % (1,7 mM) de rétinol, de +70 % (p<0,01) de 0,01 % (0,33 mM) de 10-HSA et la combinaison a augmenté les niveaux de +240 % (p<0,01 pour chaque ingrédient).
Identifiants
pubmed: 34403541
doi: 10.1111/ics.12730
pmc: PMC9255590
doi:
Substances chimiques
Collagen Type I
0
Collagen Type III
0
PPAR alpha
0
Retinoids
0
Stearic Acids
0
10-hydroxystearic acid
384M5B7IFL
Types de publication
Comparative Study
Journal Article
Langues
eng
Sous-ensembles de citation
IM
Pagination
619-626Informations de copyright
© 2021 Society of Cosmetic Scientists and Societe Francaise de Cosmetologie.
Références
J Cosmet Dermatol. 2004 Dec;3(4):191-201
pubmed: 17166106
Methods Enzymol. 2020;637:209-234
pubmed: 32359646
J Neuroimmunol. 2006 Jul;176(1-2):95-105
pubmed: 16764943
Acta Pharm Sin B. 2017 Jul;7(4):427-438
pubmed: 28752027
Exp Dermatol. 2002 Oct;11(5):398-405
pubmed: 12366692
Int J Dermatol. 2012 Jun;51(6):733-41
pubmed: 22607296
Nutr Rev. 2018 Dec 1;76(12):929-941
pubmed: 30358857
Int J Cosmet Sci. 2019 Jun;41(3):240-256
pubmed: 30955220
J Med Food. 2016 Sep;19(9):817-22
pubmed: 27627700
Biol Pharm Bull. 2010;33(5):854-61
pubmed: 20460766
J Cosmet Dermatol. 2016 Mar;15(1):49-57
pubmed: 26578346
Int J Cosmet Sci. 2021 Oct;43(5):619-626
pubmed: 34403541
J Drugs Dermatol. 2019 Jan 01;18(1s):s89-95
pubmed: 30681817
J Lipid Res. 2013 Sep;54(9):2458-74
pubmed: 23833249
J Invest Dermatol. 1991 Apr;96(4):425-33
pubmed: 1848877
J Invest Dermatol. 1995 Aug;105(2):285-90
pubmed: 7543550
Subcell Biochem. 2016;81:127-161
pubmed: 27830503