Comparative localization of the courses of superficial veins in rabbits' limbs using latex and VeinViewer systems.
VeinViewer
anatomy
latex
near infrared
rabbit
superficial vein
Journal
Anatomia, histologia, embryologia
ISSN: 1439-0264
Titre abrégé: Anat Histol Embryol
Pays: Germany
ID NLM: 7704218
Informations de publication
Date de publication:
Sep 2023
Sep 2023
Historique:
revised:
17
03
2023
received:
01
02
2023
accepted:
10
04
2023
medline:
14
9
2023
pubmed:
25
4
2023
entrez:
25
04
2023
Statut:
ppublish
Résumé
The purpose of this study; It is to reveal whether the veinviewer device, which we have not encountered in animals, can be visualized in rabbits for thoracic and pelvic limb superficial veins. Therefore, the latex method was used as a "gold test" to verify VeinViewer precision. For this purpose, the project was designed with two stages. In the first stage, the extremities of 15 New Zealand white rabbits were imaged using the VeinViewer device, and the results were recorded. In the second stage, the latex injection method was applied to the same animals, the cadavers were dissected, and the obtained results were comparatively analysed. In the rabbits, it was determined that v. cephalica originated from v. jugularis or v. brachialis in the proximity of the insertion of m. omotransversarius and anastomosed with v. mediana at the middle 1/3 level of the antebrachium. It was found that the superficial venous circulation of the pelvic limbs was provided by the branches of v. iliaca externa and v. iliaca interna. The vena saphena medialis was determined to be present in pairs in 80% of the cadavers. All cadavers showed the presence of the ramus anastomoticus cum vena saphena mediali. Additionally, the superficial veins of both the thoracic limbs and pelvic limbs of the rabbits were imaged with the VeinViewer device, which provided results parallel with the results of the latex injection method. Considering that the findings obtained with the latex injection method and the VeinViewer device were compatible, the usage of this device can potentially be considered as an alternative to visualizing superficial veins in animals. Further morphological and clinical studies can prove that the method is applicable.
Substances chimiques
Latex
0
Types de publication
Journal Article
Langues
eng
Sous-ensembles de citation
IM
Pagination
684-695Subventions
Organisme : Türkiye Bilimsel ve Teknolojik Araştirma Kurumu
ID : 219O380
Informations de copyright
© 2023 Wiley-VCH GmbH. Published by John Wiley & Sons Ltd.
Références
Aksoy, G., & Karadağ, H. (2002). Evcil kedi ve beyaz Yeni Zelanda tavşanlarında kalp ve kalp arteria'ları üzerinde anatomik bir araştırma. Veteriner Bilimleri Dergisi. Eurasian Journal of Veterinary Sciences, 18(1-2), 33-40.
Allen, P., Bennett, K., & Heritage, B. (2014). SPSS statistics version 22: A practical guide. Cengage Learning Australia.
Alvernia, J. E., Pradilla, G., Mertens, P., Lanzino, G., & Tamargo, R. J. (2010). Latex injection of cadaver heads: Technical note. Neurosurgery, 67(2 Suppl), 362-367. https://doi.org/10.1227/NEU.0b013e3181f8c247
Bahar, S., Dayan, M. O., Bolat, D., & Tıpırdamaz, S. (2007). The macroanatomy of external iliac and femoral arteries in angora rabbit. Eurasian Journal of Veterinary Sciences, 23(3), 75-83.
Barone, R., Pavaux, C., Blin, P., & Cuq, P. (1973). Atlas of rabbit anatomy (1st ed.). Atlas of Rabbit Anatomy.
Bas, C. E., Cwykiel, J., & Siemionow, M. (2017). A new supermicrosurgery training model of saphenous artery and great saphenous vein anastomosis for development of advanced microsurgical skills. Journal of Reconstructive Microsurgery, 33(6), 426-434. https://doi.org/10.1055/s-0037-1599101
Bozkurt, E. Ü. (2001). Tavşanda Göğüs ve Ön Extremitenin Toplardamarları Üzerinde Makroanatomik Çalışmalar. Doktora tezi, Ankara Üniversitesi.
Bozkurt, E. Ü., & Dursun, N. (2004). Tavşanda ön ekstremitenin venöz damarları üzerine makroanatomik bir çalışma. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 51(3), 167-172.
Bugge, J. (1963). A standardized plastic injection technique for anatomical purposes. Cells, Tissues, Organs, 54(3), 177-192.
Burling, K. A., & Collipp, P. J. (1969). Emotional responses of hospitalized children: Results of a pulse-monitor study. Clinical Pediatrics, 8(11), 641-646.
Çalışkaner, Ş. (1993). Kürk Hayvanlarının Beslenmesi. Ankara Üniversitesi Ziraat Fakültesi Yayınları.
Çalışlar, T. (1978). Laboratuvar Hayvanları Anatomisi. Ankara Üniversitesi Basımevi.
Çalışlar, T. (1995). Evcil Hayvanların Sistemik Anatomisi. İstanbul Üniversitesi Veteriner Fakültesi Yayınları.
Cömert, A., & Kahiloğulları, G. (2011). Beyin Arterlerini Renklendirilmiş Lateks ile Doldurma Tekniği: Cerrahi Nöröanatomi Egitimi ve Araştırmaları için Yararlı ve Kullanışlı Bir Yöntem. Türk Nöröşirurji Derneği Bülteni.
Craigie, E. H. (1969). A Laboratory Guide to the Anatomy of the Rabbit. University of Toronto Press.
Dan, G., Guo, Z., Ding, H., & Zhou, Y. (2015). Enhancement of dorsal hand vein image with a low-cost binocular vein viewer system. Journal of Medical Imaging and Health Informatics, 5(2), 359-365.
Demiraslan, Y., & Dayan, M. (2021). Veteriner sistematik anatomi. Nobel Kitabevi.
Doğuer, S. (1970). Evcil Hayvanların Komparatif Sistematik Anatomisi. Dolaşım Sistemi-Angiologia. Ankara Üniv Vet Fak Yay, Ankara Üniv Basımevi.
Dursun, N. (2008a). Veteriner Anatomi II 12. Basım. Medisan Yayınevi.
Dursun, N. (2008b). Veteriner Anatomi II. 12. Baskı.
Eken, E. (1999). Akkaraman koyunu ve Ankara keçilerinde, arka ekstremite, karın ve pelvis boşluğu venaları (V. portae hariç) üzerinde karşılaştırmalı makro-anatomik araştırmalar.
Erençin, Z. (1967). Enjeksiyon Yoluyla Damar ve Kanal Sistemleri İçin Plastik Demonstrasyon Metotlarının Geliştirilmesi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 14(3), 444.
Field, H. E., & Taylor, M. E. (2018). An Atlas of Cat Anatomy. University of Chicago Press.
Flecknell, P. (2015). Laboratory Animal Anaesthesia. Academic press.
Fox, R. R. (1984). The Rabbit as a Research Subject.
Ganesh, S. (2007). Depth and size limits for the visibility of veins using the veinviewer imaging system.
Getty, R., & Sisson, S. (1975). Sisson and Grossman's the anatomy of the domestic animals.
Ghoshal, N., & Getty, R. (1970). Comparative morphological study of the major arterial supply to the thoracic limb of the domestic animals (Bos taurus, Ovis aries, Capra hircus, Sus scrofa domestica, Equus caballus). Anatomischer Anzeiger, 127(4), 422-443.
Ghoshal, N. G., Koch, T., & Popesko, P. (1981). The Venous Drainage of the Domestic Animals. Saunders.
Greene, C. (1963). The Anatomy of the Rat: Transactions of the American Philosophical Society (Vol. 27). Hafner Publishing Company.
Gültiken, M. E. (2005). Yeni Zelanda tavşanında (Oryctolagus cuniculus L.) v. cava caudalis' in terminal dallarından v. iliaca interna üzerine anatomik incelemeler. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 52, 137-142.
Hess, H. A. (2010). A biomedical device to improve pediatric vascular access success. Pediatric Nursing, 36(5), 259-263.
Jacobson, A. F., & Winslow, E. H. (2005). Variables influencing intravenous catheter insertion difficulty and failure: An analysis of 339 intravenous catheter insertions. Heart and Lung, 34(5), 345-359. https://doi.org/10.1016/j.hrtlng.2005.04.002
Karaaltin, M. V. (2013). Utilizing the vein viewer technology to map out a venous flap preoperatively. Journal of Reconstructive Microsurgery, 29(6), 423-424. https://doi.org/10.1055/s-0033-1343951
Koch, T., & Roff, B. (1993). Der Veterinar Anatomie. Band III. Die Groben Verssorgungs-und Steuerungs Systeme Band III. Gustav fisher Verlag Jena.
Landolfi, M., Karmarkar, S., Bhatia, S., Taibah, A., Russo, A., & Sanna, M. (1995). An easy, cost-effective and time-conserving method of studying the vascular anatomy of the base of the skull. Skull Base Surgery, 5(3), 181-184.
Mbamalu, D., & Banerjee, A. (1999). Methods of obtaining peripheral venous access in difficult situations. Postgraduate Medical Journal, 75(886), 459-462.
McClure, R. C., Dallman, M. J., & Garrett, P. D. (1973). Cat Anatomy: An Atlas, Text, and Dissection Guide. Lea & Febiger.
McLaughlin, C. A., & Chiasson, R. B. (1990). Laboratory anatomy of the rabbit.
Miller, M., & Cristiensen, G. C. (1964). Anatomy of the Dog. WB Saunders.
Miyake, K., Zeman, H., Duarte, F., Kikuchi, R., Ramacciotti, E., Lovhoiden, G., & Vrancken, C. (2006). Vein imaging: A new method of near infrared imaging, where a processed image is projected onto the skin for the enhancement of vein treatment. Dermatologic Surgery, 32(8), 1031-1038.
Mutuş, R. (2002). Tavşanlarda Vena Linguofacialis'in Dağılımının Makroanatomik Olarak İncelenmesi. İstanbul Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 28(1), 175-183.
NAV, N. A. (2017). International Committee on Veterinary Gross Anatomical Nomenclature (ICVGAN). Published by the Editorial Committee, Hannover.
Nickel, R., Schummer, A., Seiferle, E., Wilkens, H., Wille, K.-H., & Frewein, J. (1981). The Anatomy of the Domestic Animals (Vol. III). Springer.
Nur, İ. (1995). Yeni Zelanda Tavşanlarında Vena Porta'nın Oluşumuna Katılan Dallar Üzerinde Makroanatomik Bir Çalışına. Yüzüncü Yıl Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 6(1), 21-27.
Özgel, Ö., & Dursun, N. (2003). Yeni. Zelanda tavşanında (Oryctolagus cuniculus L.) baş bölgesinin vena'ları II. Bölüm: V. linguofacialis ve dalları. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 50(3), 181-185. https://doi.org/10.1501/Vetfak_0000002249
Özgel, Ö., & Karakurum, E. (2018). König Veteriner anatomi: (Evcil memeli hayvanlar): Metin ve renkli atlas. Medipres.
Özmen, E. (1999). Beyaz Yeni Zelanda tavşanı ve evcil kedilerin vena iliaca externa ve dalları üzerinde karşılaştırmalı makro-anatomik ve subgros bir çalışma. Doktora tezi, Van.
Özüdoğru, Z. (1999). Beyaz Yeni Zelanda tavşanı ve evcil kedilerin vena subclavia ve dalları üzerinde karşılaştırmalı makro-anatomik ve subgros bir çalışma.
Özüdoğru, Z., & Aksoy, G. (2009). Tuj koyununun ön bacak venaları üzerine makroanatomik bir çalışma. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 15(5), 771-778.
Özüdoğru, Z., Aksoy, G., & Özdemir, D. (2009). Morkaraman Koyununun Ön Bacak Venleri Üzerine Makroanatomik Bir Çalışma. Atatürk Üniversitesi Veteriner Bilimleri Dergisi, 4(1), 39-47.
Popesko, P., Rajtová, V., & Horák, J. (1992a). Colour Atlas of the Anatomy of Small Laboratory Animals (Vol. I). Wolfe Pub Ltd.
Popesko, P., Rajtová, V., & Horák, J. (1992b). Colour Atlas of the Anatomy of Small Laboratory Animals (Vol. II). Wolfe Pub Ltd.
Rauch, D., Dowd, D., Eldridge, D., Mace, S., Schears, G., & Yen, K. (2009). Peripheral difficult venous access in children. Clinical Pediatrics, 48(9), 895-901. https://doi.org/10.1177/0009922809335737
Rickard, C. M., Webster, J., Wallis, M. C., Marsh, N., McGrail, M. R., French, V., Foster, L., Gallagher, P., Gowardman, J. R., & Zhang, L. (2012). Routine versus clinically indicated replacement of peripheral intravenous catheters: A randomised controlled equivalence trial. The Lancet, 380(9847), 1066-1074.
Sabri, A., Szalas, J., Holmes, K. S., Labib, L., & Mussivand, T. (2013). Failed attempts and improvement strategies in peripheral intravenous catheterization. Bio-Medical Materials and Engineering, 23(1-2), 93-108. https://doi.org/10.3233/bme-120735
Şancı, Y., & Balcı, S. (2020). Pediatrik Vasküler Erişim Uygulamalarında Güncel Yaklaşım: Damar Görüntüleme Tekniği. Acıbadem Üniversitesi Sağlık Bilimleri Dergisi, 2, 200-203.
Strehle, E. M. (2010). Making the invisible visible: Near-infrared spectroscopy and phlebotomy in children. Telemedicine Journal and E-Health, 16(8), 889-893. https://doi.org/10.1089/tmj.2010.0061
Tanaka, Y., Crowe, D. M., Wagh, M., & Morrison, W. A. (1999). New source of vein graft for rabbit experimentation. Microsurgery, 19(4), 167-170.
Tekdemir, İ., Aysun, U., Tüccar, E., Çubuk, H. E., & Elhan, A. (1999). Vasküler Anatomi Çalışmalarında Renklendirilmiş Lateks Uygulaması. Ankara Üniversitesi Tıp Fakültesi Mecmuası, 52(1), 23-26.
Tıpırdamaz, S., Yalçın, H., Beşoluk, K., & Eken, E. (1999). Ruminantlarda toplardamarlar.
Tuncay, A. (2001). Enfrafuj Teknolojili Yeni Bir Vasküler Görüntüleyiciyle (VeinViewer) Venöz Hastalıkların Tanı ve Tedavisinde Güncel Uygulamalar. Doktora Tezi.
Tunçay, A. (2018). Actual practices in diagnosis and treatment of venous diseases by using Veinviewer. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tıp Fakültesi Dergisi, 13(2), 48-50.
Wingerd, B. (1984). Rabbit Dissection Manuel. The Jhons Hopkins University Press.
Yalçın, H. (1996). Akkaraman koyunu ve Ankara keçisinde cranial ve cervical kısımlarının venaları üzerinde karşılaştırmalı makroanatomik araştırmalar. Doktora tezi, Selçuk Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Anatomi Anabilim Dalı. Konya.
Yavru, N., & Yavru, S. (1996). Deney Hayvanları, Konya (1st ed.). Selçuk Üniv. Veteriner Fak. Yayın Ünitesi, 119-127.
Yazıcıoğlu, T. (1981). Kürk Teknolojisi. Ege Üniversitesi Matbaası.
Zharov, V. P., Ferguson, S., Eidt, J. F., Howard, P. C., Fink, L. M., & Waner, M. (2004). Infrared imaging of subcutaneous veins. Lasers in Surgery and Medicine, 34(1), 56-61.
Zyhier, S. (2018). The Efficacy of Near Infrared Vein Finder Technology to Decrease Multiple Intravenous Cannulation in Patients by Novice and Advanced Beginner Nurses: A Mixed Methods Study on Improving Intravenous Catheter Insertion. Robert Morris University.