Gizzard Erosion and Ulceration Syndrome in Moroccan Poultry Flocks and Molecular Characterization of Fowl Adenoviruses (FAdV).


Journal

Avian diseases
ISSN: 1938-4351
Titre abrégé: Avian Dis
Pays: United States
ID NLM: 0370617

Informations de publication

Date de publication:
Sep 2024
Historique:
received: 26 01 2024
accepted: 11 06 2024
medline: 14 10 2024
pubmed: 14 10 2024
entrez: 14 10 2024
Statut: ppublish

Résumé

Gizzard erosion and ulceration syndrome (GEUS) is caused by a fowl adenovirus serotype 1 (FAdV-1) and was first reported in laying hens in Japan in 1993. This syndrome has emerged as an epizootic in Morocco since 2014, causing significant economic losses for the poultry industry, but no involvement of a FAdV has been confirmed. Thus, the objective of this work was to assess GEUS cases that occurred in the country and to determine the role of FAdVs in their occurrence. Investigations were based on a retrospective reassessment of tissue sections and paraffin blocks of gizzards and livers from GEUS cases between 2014 and 2021 coupled with a prospective search of cases in 2022. Gizzards and livers were fixed in 10% neutral buffered formalin for histopathologic examinations according to standard methods and stored at -20 C for molecular analysis. After deparaffinizing, 10-µm-thick tissue sections along with fresh organs were subjected to DNA extraction using a commercial kit. A primer pair specific for the Hexon gene of FAdVs was used in conventional PCR; in contrast, for real-time PCR, a primer pair targeting the 52K gene was employed. In total, 24 flock cases with characteristic GEUS were assessed between 2014 and 2022. They were nine broiler cases aged between 11 and 39 days, 11 layer cases with an age between 17 and 29 wk, two cases in meat-type breeders aged 10 and 27 wk, and two flock cases of turkey poults aged 22 and 23 days. In most cases, microscopic lesions were consistent with an ulcerative and lymphoplasmocytic ventriculitis, and pathognomonic viral intranuclear inclusion bodies within degenerate epithelial cells were identified in four broiler flock cases, four layer cases, and one case in breeders and hence were highly suggestive of a FAdV infection. Among these nine cases that were positive at the histopathologic examination, six cases were found to be FAdV-PCR positive; another four cases were negative to histology but FAdV-PCR positive. Furthermore, a sequencing analysis was conducted, providing the initial evidence of the implication of FAdV-1 from species A as the cause of GEUS in Moroccan poultry. Additionally, a phylogenetic analysis was executed to facilitate a comparison between the strains investigated in this study and those identified in diverse geographic regions and across various time periods. Síndrome de erosión y ulceración de la molleja en parvadas avícolas marroquíes y caracterización molecular de los adenovirus aviares (FAdV). El síndrome de erosión y ulceración de la molleja (GEUS) es causado por un adenovirus del pollo de serotipo 1 (FAdV-1) y se reportó por primera vez en gallinas de postura en Japón en 1993. Este síndrome se ha convertido en una epizootia en Marruecos desde 2014, causando importantes pérdidas económicas a la industria avícola, pero no se ha confirmado la participación de ningún adenovirus del pollo. Por lo tanto, el objetivo de este trabajo fue evaluar los casos de GEUS ocurridos en el país y determinar el papel de adenovirus del pollo en su presentación. Las investigaciones se basaron en una reevaluación retrospectiva de secciones de tejido y bloques de parafina de mollejas e hígados de casos de GEUS entre 2014 y 2021, junto con una investigación prospectiva de casos en el año 2022. Las mollejas y los hígados se fijaron en formalina al 10% amortiguada y neutra para exámenes histopatológicos de acuerdo con métodos estándar y se almacenaron a -20 C para análisis moleculares. Después de la desparafinación, las secciones de tejido de 10 µm de espesor junto con órganos frescos se sometieron a extracción de ADN utilizando un estuche comercial. Para realizar un método de PCR convencional, se utilizó un par de iniciadores específicos para el gene de hexon de los adenovirus del pollo, mientras que, para el método de PCR en tiempo real, se empleó un par de iniciadores dirigidos al gene 52K. En total, se evaluaron 24 casos de parvadas con la presentación característica del síndrome de erosión y ulceración de la molleja entre los años 2014 y 2022. Se trató de nueve casos de pollos de engorde con edades comprendidas entre los 11 y 39 días, 11 casos de ponedoras con una edad de entre 17 y 29 semanas, dos casos en reproductoras pesadas de 10 y 27 semanas, y dos lotes de pavitos de 22 y 23 días. En la mayoría de los casos, las lesiones microscópicas fueron consistentes con una ventriculitis ulcerativa y linfoplasmocítica, y se identificaron cuerpos de inclusión intranucleares virales patognomónicos dentro de células epiteliales degeneradas en cuatro casos de parvadas de pollos de engorde, cuatro casos de ponedoras y un caso en reproductoras y por lo tanto, fueron altamente sugestivos de la infección por adenovirus de pollo. Entre los nueve casos que fueron positivos en el examen histopatológico, se encontró que seis casos fueron positivos para adenovirus de pollo mediante PCR; otros cuatro casos fueron negativos a la histología pero positivos a la presencia de adenovirus del pollo mediante PCR. Además, se realizó un análisis de secuenciación que proporcionó la evidencia inicial del papel de adenovirus del pollo especie A como causante del síndrome de erosión y ulceración de la molleja en la avicultura de Marruecos. Además, se realizó un análisis filogenético para facilitar una comparación entre las cepas investigadas en este estudio y las identificadas en diversas regiones geográficas y en varios períodos de tiempo.

Autres résumés

Type: Publisher (spa)
Síndrome de erosión y ulceración de la molleja en parvadas avícolas marroquíes y caracterización molecular de los adenovirus aviares (FAdV). El síndrome de erosión y ulceración de la molleja (GEUS) es causado por un adenovirus del pollo de serotipo 1 (FAdV-1) y se reportó por primera vez en gallinas de postura en Japón en 1993. Este síndrome se ha convertido en una epizootia en Marruecos desde 2014, causando importantes pérdidas económicas a la industria avícola, pero no se ha confirmado la participación de ningún adenovirus del pollo. Por lo tanto, el objetivo de este trabajo fue evaluar los casos de GEUS ocurridos en el país y determinar el papel de adenovirus del pollo en su presentación. Las investigaciones se basaron en una reevaluación retrospectiva de secciones de tejido y bloques de parafina de mollejas e hígados de casos de GEUS entre 2014 y 2021, junto con una investigación prospectiva de casos en el año 2022. Las mollejas y los hígados se fijaron en formalina al 10% amortiguada y neutra para exámenes histopatológicos de acuerdo con métodos estándar y se almacenaron a -20 C para análisis moleculares. Después de la desparafinación, las secciones de tejido de 10 µm de espesor junto con órganos frescos se sometieron a extracción de ADN utilizando un estuche comercial. Para realizar un método de PCR convencional, se utilizó un par de iniciadores específicos para el gene de hexon de los adenovirus del pollo, mientras que, para el método de PCR en tiempo real, se empleó un par de iniciadores dirigidos al gene 52K. En total, se evaluaron 24 casos de parvadas con la presentación característica del síndrome de erosión y ulceración de la molleja entre los años 2014 y 2022. Se trató de nueve casos de pollos de engorde con edades comprendidas entre los 11 y 39 días, 11 casos de ponedoras con una edad de entre 17 y 29 semanas, dos casos en reproductoras pesadas de 10 y 27 semanas, y dos lotes de pavitos de 22 y 23 días. En la mayoría de los casos, las lesiones microscópicas fueron consistentes con una ventriculitis ulcerativa y linfoplasmocítica, y se identificaron cuerpos de inclusión intranucleares virales patognomónicos dentro de células epiteliales degeneradas en cuatro casos de parvadas de pollos de engorde, cuatro casos de ponedoras y un caso en reproductoras y por lo tanto, fueron altamente sugestivos de la infección por adenovirus de pollo. Entre los nueve casos que fueron positivos en el examen histopatológico, se encontró que seis casos fueron positivos para adenovirus de pollo mediante PCR; otros cuatro casos fueron negativos a la histología pero positivos a la presencia de adenovirus del pollo mediante PCR. Además, se realizó un análisis de secuenciación que proporcionó la evidencia inicial del papel de adenovirus del pollo especie A como causante del síndrome de erosión y ulceración de la molleja en la avicultura de Marruecos. Además, se realizó un análisis filogenético para facilitar una comparación entre las cepas investigadas en este estudio y las identificadas en diversas regiones geográficas y en varios períodos de tiempo.

Identifiants

pubmed: 39400216
doi: 10.1637/aviandiseases-D-24-00004
doi:

Types de publication

Journal Article

Langues

eng

Sous-ensembles de citation

IM

Pagination

217-224

Références

Gjevre AG, Kaldhusdal M, Eriksen GS. Gizzard erosion and ulceration syndrome in chickens and turkeys: a review of causal or predisposing factors.
Abe T, Nakamura K, Tojo T, Yuasa N. Gizzard erosion in broiler chicks by group I avian adenovirus.
Novoa-Garrido M, Larsen S, Kaldhusdal M. Association between gizzard lesions and increased caecal
Tanimura N, Nakamura K, Imai K, Maeda M, Gobo T, Nitta S, Ishihara T, Amano H. Necrotizing pancreatitis and gizzard erosion associated with adenovirus infection in chickens.
Hess M. Detection and differentiation of avian adenoviruses: a review.
Nakamura K, Tanaka H, Mase M, Imada T, Yamada M. Pancreatic necrosis and ventricular erosion in adenovirus-associated hydropericardium syndrome of broilers.
Okuda Y, Ono M, Shibata I, Sato S. Pathogenicity of serotype 8 fowl adenovirus isolated from gizzard erosions of slaughtered broiler chickens.
Ono M, Okuda Y, Yazawa S, Imai Y, Shibata I, Sato S, Okada K. Adenoviral gizzard erosion in commercial broiler chickens.
Marek A, Schulz E, Hess C, Hess M. Comparison of the fibers of fowl adenovirus A serotype 1 isolates from chickens with gizzard erosions in Europe and apathogenic reference strains.
Schachner A, Matos M, Grafl B, Hess M. Fowl adenovirus-induced diseases and strategies for their control—a review on the current global situation.
Mirzazadeh A, Asasi K, Schachner A, Mosleh N, Liebhart D, Hess M, Grafl B. Gizzard erosion associated with fowl adenovirus infection in slaughtered broiler chickens in Iran.
Matczuk AK, Niczyporuk JS, Kuczkowski M, Wo'zniakowski G, Nowak M, Wieliczko A. Whole genome sequencing of fowl aviadenovirus A—a causative agent of gizzard erosion and ulceration, in adult laying hens.
Pikor LA, Enfield KSS, Cameron H, Lam WL. DNA extraction from paraffin embedded material for genetic and epigenetic analyses.
Günes A, Marek A, Grafl B, Berger E, Hess M. Real-time PCR assay for universal detection and quantitation of all five species of fowl adenoviruses (FAdV-A to FAdV-E).
Abghour S, Zro K, Mouahid M, Tahiri F, Tarta M, Berrada J, Kichou F. Isolation and characterization of fowl aviadenovirus serotype 11 from chickens with inclusion body hepatitis in Morocco.
Hall TA. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for windows 95/98/NT.
Thompson JD, Higgins DG, Gibson TJ. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice.
Tamura K, Stecher G, Peterson D, Filipski A, Kumar S. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0.
Grafl B, Aigner F, Liebhart D, Marek A, Prokofieva I, Bachmeier J, Hess M. Vertical transmission and clinical signs in broiler breeders and broilers experiencing adenoviral gizzard erosion.
Grafl B, Liebhart D, Günes A, Wernsdorf P, Aigner F, Bachmeier J, Hess M. Quantity of virulent fowl adenovirus serotype 1 correlates with clinical signs, macroscopical and pathohistological lesions in gizzards following experimental induction of gizzard erosion in broilers.
Manarolla G, Pisoni G, Moroni P, Gallazzi D, Sironi G, Rampin T. Adenoviral gizzard erosions in Italian chicken flocks.
Schade B, Schmitt F, Böhm B, Alex M, Fux R, Cattoli G, Terregino C, Monne I, Currie RJW, Olias P. Adenoviral gizzard erosion in broiler chickens in Germany.
Abghour S, Mouahid M, Darkaoui S, Berrada J, Zro K, Kichou F. Pathogenicity of field strain of fowl aviadenovirus serotype 11 isolated from chickens with inclusion body hepatitis in Morocco.
Mouahid M, Bengoumi D, Kichou F. Case report of recent outbreaks of inclusion body hepatitis among broilers in Morocco. In: Book of abstracts of
Domanska-Blicharz K, Tomczyk G, Smietanka K, Kozaczynski W, Minta Z. Molecular characterization of fowl adenoviruses isolated from chickens with gizzard erosions.
Grafl B, Garcia-Rueda C, Cargill P, Wood A, Schock A, Liebhart D, Schachner A, Hess M. Fowl aviadenovirus serotype 1 confirmed as the aetiological agent of gizzard erosions in replacement pullets and layer flocks in Great Britain by laboratory and
Grgíc H, Philippe C, Ojkíc D, Nagy E. ' Study of vertical transmission of fowl adenoviruses.
Mazaheri A, Prusas C, Voss M, Hess M. Vertical transmission of fowl adenovirus serotype 4 investigated in specified pathogen-free birds after experimental infection.
Saifuddin MD, Wilks CR. Reproduction of inclusion body hepatitis in conventionally raised chickens inoculated with a New Zealand isolate of avian adenovirus.
Toro H, González O, Escobar C, Cerda L, Morales MA, Gonzalez C. Vertical induction of the inclusion body hepatitis/hydropericardium syndrome with fowl adenovirus and chicken anemia virus.
Abo-Al-Ela HG, El-Kassas S, El-Naggar K, Abdo SE, Jahejo AR, Al Wakeel RA. Stress and immunity in poultry: light management and nanotechnology as effective immune enhancers to fight stress.
Mirzazadeh A, Grafl B, Abbasnia M, Emadi-Jamali S, Abdi-Hachesoo B, Schachner A, Hess M. Reduced performance due to adenoviral gizzard erosion in 16-day-old commercial broiler chickens in Iran, confirmed experimentally.
Ono M, Okuda Y, Yazawa S, Shibata I, Tanimura N, Kimura K, Haritani M, Mase M, Sato S. Epizootic outbreaks of gizzard erosion associated with adenovirus infection in chickens.
Hess M. Adenovirus infections. In: Swayne DE, editor.
Mittal D, Jindal N, Tiwari AK, Khokhar RS. Characterization of fowl adenoviruses associated with hydropericardium syndrome and inclusion body hepatitis in broiler chickens.
Maartens LH, Joubert HW, Aitchison H, Venter EH. Inclusion body hepatitis associated with an outbreak of fowl adenovirus type 2 and type 8b in broiler flocks in South Africa. J
Oliver-Ferrando S, Dolz R, Calderón C, Valle R, Rivas R, Pérez M, Bairnés M, Blanco A, Bertran K, Ramis A, Busquets N, Majó N. Epidemiological and pathological investigation of fowl aviadenovirus serotypes 8b and 11 isolated from chickens with inclusion body hepatitis in Spain (2011–2013).
Chitradevi S, Sukumar K, Suresh P, Balasubramaniam GA, Kannan D. Molecular typing and pathogenicity assessment of fowl adenovirus associated with inclusion body hepatitis in chicken from India.
Redondo H, Fragoso JS, Tahala MA, Bensassi Y, Gil I, Elbachir E, Rodríguez MJ, Moreno JCA. Characterization of strain of fowl adenoviruses circulating in Morocco.
Lindgren Y, Banihashem F, Berg M, Eriksson H, Zohari S, Jansson DS. Gizzard erosions in broiler chickens in Sweden caused by fowl adenovirus serotype 1 (FAdV-1): investigation of outbreaks, including whole-genome sequencing of an isolate.

Auteurs

Ikram Ouchhour (I)

Department of Veterinary Pathology and Public Health, Hassan 2nd Institute of Agronomy and Veterinary Medicine, B.P. 6202, Rabat, Morocco.

Siham Fellahi (S)

Department of Veterinary Pathology and Public Health, Hassan 2nd Institute of Agronomy and Veterinary Medicine, B.P. 6202, Rabat, Morocco, fellahisiham2015@gmail.com, s.fellahi@iav.ac.ma.

Oumayma Arbani (O)

Department of Veterinary Pathology and Public Health, Hassan 2nd Institute of Agronomy and Veterinary Medicine, B.P. 6202, Rabat, Morocco.

Mourad Mastour (M)

Department of Veterinary Pathology and Public Health, Hassan 2nd Institute of Agronomy and Veterinary Medicine, B.P. 6202, Rabat, Morocco.

Ahmed Achehal El Kadmiri (AAE)

Cabinet Vétérinaire, 29640, Tit Mellil, Morocco.

Mohamed Mouahid (M)

Clinique Vétérinaire Dr Mouahid, 12010, Témara, Morocco.

Amina Kardoudi (A)

Department of Veterinary Pathology and Public Health, Hassan 2nd Institute of Agronomy and Veterinary Medicine, B.P. 6202, Rabat, Morocco.

Abdelouaheb Benani (A)

Medical Biology Department, Molecular Biology Laboratory, Pasteur Institute of Morocco, 20360, Casablanca, Morocco.

Abdelmounaim Allaoui (A)

Microbiology Laboratory/African Genome Center, Mohammed VI Polytechnic University, 43150, Ben Guerir, Morocco.

Faouzi Kichou (F)

Department of Veterinary Pathology and Public Health, Hassan 2nd Institute of Agronomy and Veterinary Medicine, B.P. 6202, Rabat, Morocco.

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