Titre : Virus maedi-visna

Virus maedi-visna : Questions médicales fréquentes

Termes MeSH sélectionnés :

Infant

Questions fréquentes et termes MeSH associés

Diagnostic 5

#1

Comment diagnostiquer une infection par le virus maedi-visna ?

Le diagnostic repose sur des tests sérologiques et des analyses PCR pour détecter le virus.
Virus maedi-visna Diagnostic médical
#2

Quels tests sont utilisés pour le virus maedi-visna ?

Les tests ELISA et PCR sont couramment utilisés pour identifier le virus dans le sang.
Tests de diagnostic Virus maedi-visna
#3

Les symptômes aident-ils au diagnostic ?

Oui, les symptômes cliniques comme la pneumonie et l'encéphalite orientent le diagnostic.
Symptômes Virus maedi-visna
#4

Peut-on diagnostiquer le virus chez les animaux asymptomatiques ?

Oui, des tests sérologiques peuvent détecter le virus même sans symptômes visibles.
Virus maedi-visna Infection virale
#5

Quelle est l'importance du diagnostic précoce ?

Un diagnostic précoce permet de mieux gérer la maladie et de limiter sa propagation.
Diagnostic précoce Virus maedi-visna

Symptômes 5

#1

Quels sont les symptômes principaux du virus maedi-visna ?

Les symptômes incluent toux, difficultés respiratoires et troubles neurologiques.
Symptômes Virus maedi-visna
#2

Les symptômes varient-ils selon l'âge des moutons ?

Oui, les jeunes animaux peuvent présenter des symptômes plus graves que les adultes.
Âge Virus maedi-visna
#3

Y a-t-il des symptômes neurologiques associés ?

Oui, des signes neurologiques comme des tremblements et des troubles de la coordination peuvent apparaître.
Symptômes neurologiques Virus maedi-visna
#4

Les symptômes sont-ils toujours présents ?

Non, certains animaux peuvent être porteurs sans montrer de symptômes cliniques.
Portage asymptomatique Virus maedi-visna
#5

Comment évoluent les symptômes au fil du temps ?

Les symptômes peuvent s'aggraver progressivement, menant à des complications graves.
Évolution des symptômes Virus maedi-visna

Prévention 5

#1

Comment prévenir l'infection par le virus maedi-visna ?

La prévention passe par l'isolement des animaux infectés et des pratiques d'élevage saines.
Prévention Virus maedi-visna
#2

Les tests de dépistage sont-ils efficaces ?

Oui, le dépistage régulier des troupeaux permet de détecter et d'éliminer les animaux infectés.
Dépistage Virus maedi-visna
#3

Quelles mesures d'hygiène sont recommandées ?

Des mesures d'hygiène strictes, comme le nettoyage des équipements, sont essentielles.
Hygiène Virus maedi-visna
#4

Les animaux doivent-ils être vaccinés ?

Bien qu'il n'y ait pas de vaccin, la vaccination contre d'autres maladies est recommandée.
Vaccination Virus maedi-visna
#5

Comment gérer les nouveaux animaux dans un troupeau ?

Les nouveaux animaux doivent être testés et mis en quarantaine avant d'intégrer le troupeau.
Quarantaine Virus maedi-visna

Traitements 5

#1

Quel est le traitement principal pour le virus maedi-visna ?

Il n'existe pas de traitement spécifique; la gestion des symptômes est essentielle.
Traitement Virus maedi-visna
#2

Peut-on utiliser des antiviraux contre ce virus ?

Actuellement, il n'y a pas d'antiviraux efficaces spécifiquement pour le virus maedi-visna.
Antiviraux Virus maedi-visna
#3

Comment gérer les animaux infectés ?

Les animaux infectés doivent être isolés et traités symptomatiquement pour améliorer leur confort.
Gestion des animaux Virus maedi-visna
#4

Y a-t-il des vaccins disponibles ?

Il n'existe pas de vaccin commercialement disponible contre le virus maedi-visna.
Vaccins Virus maedi-visna
#5

Quel rôle joue la nutrition dans le traitement ?

Une bonne nutrition peut aider à renforcer le système immunitaire des animaux infectés.
Nutrition Virus maedi-visna

Complications 5

#1

Quelles complications peuvent survenir avec le virus maedi-visna ?

Les complications incluent pneumonie chronique et encéphalite, pouvant être mortelles.
Complications Virus maedi-visna
#2

Les complications sont-elles fréquentes ?

Oui, les complications sont courantes chez les animaux infectés, surtout sans traitement.
Fréquence des complications Virus maedi-visna
#3

Comment les complications affectent-elles la production ?

Les complications peuvent réduire la productivité des animaux, affectant la rentabilité de l'élevage.
Production animale Virus maedi-visna
#4

Les complications sont-elles réversibles ?

Certaines complications peuvent être gérées, mais beaucoup sont irréversibles et graves.
Complications irréversibles Virus maedi-visna
#5

Quel est le pronostic pour les animaux infectés ?

Le pronostic dépend de la gravité des symptômes; beaucoup développent des complications graves.
Pronostic Virus maedi-visna

Facteurs de risque 5

#1

Quels sont les facteurs de risque d'infection ?

Les facteurs incluent l'âge, le stress, et la densité de population dans le troupeau.
Facteurs de risque Virus maedi-visna
#2

Le stress augmente-t-il le risque d'infection ?

Oui, le stress peut affaiblir le système immunitaire, augmentant le risque d'infection.
Stress Virus maedi-visna
#3

Les races de moutons sont-elles affectées différemment ?

Certaines races peuvent être plus susceptibles à l'infection en raison de leur génétique.
Races animales Virus maedi-visna
#4

L'environnement joue-t-il un rôle dans l'infection ?

Oui, un environnement surpeuplé et insalubre favorise la propagation du virus.
Environnement Virus maedi-visna
#5

Les pratiques d'élevage influencent-elles le risque ?

Oui, des pratiques d'élevage inadéquates augmentent le risque de transmission du virus.
Pratiques d'élevage Virus maedi-visna
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Dr Olivier Menir

Contenu validé par Dr Olivier Menir

Expert en Médecine, Optimisation des Parcours de Soins et Révision Médicale


Validation scientifique effectuée le 15/04/2025

Contenu vérifié selon les dernières recommandations médicales

Auteurs principaux

Xujie Duan

3 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China.

Xiaona Shi

3 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China.

Shuying Liu

3 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China. liushuying1968@imau.edu.cn.

Stefán R Jónsson

3 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Institute for Experimental Pathology, University of Iceland, Keldur, Reykjavik 112, Iceland.

Yalçın Yaman

3 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Siirt University Faculty of Veterinary Medicine, Department of Genetics, Siirt, Türkiye.

Cemal Ün

3 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Ege University Faculty of Science Department of Biology Molecular Biology Section, İzmir, Türkiye; Ege University Vaccine Development Application and Research Center, İzmir, Türkiye.

Duncan R Smith

3 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Institute of Molecular Biosciences, Mahidol University, Salaya, 73170, Thailand. duncan_r_smith@hotmail.com.

Pei Zhang

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China.

Xiaoyue Du

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China.

Sixu Chen

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China.

Liang Zhang

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China.

Huiping Li

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Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China.

Yufei Zhang

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Affiliations :
  • College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Inner Mongolia Key Laboratory of Basic Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China.
  • Key Laboratory of Clinical Diagnosis and Treatment Technology for Animal Disease, Ministry of Agriculture, Hohhot 010018, China.

Yingxia Hu

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Department of Molecular Biophysics and Biochemistry, Yale University, New Haven, CT, USA.

Kirsten M Knecht

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Department of Molecular Biophysics and Biochemistry, Yale University, New Haven, CT, USA.

Yong Xiong

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Department of Molecular Biophysics and Biochemistry, Yale University, New Haven, CT, USA.

Anniken Jerre Borge

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Norwegian Veterinary Institute, P.O. Box 64, 1431 Ås, Norway.

Britt Gjerset

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Norwegian Veterinary Institute, P.O. Box 64, 1431 Ås, Norway.

Aphrodite I Kalogianni

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Laboratory of Anatomy and Physiology of Farm Animals, Department of Animal Science, Agricultural University of Athens (AUA), Iera Odos 75 str., 11855 Athens, Greece.
Publications dans "Virus maedi-visna" :

Ioannis Bossis

2 publications dans cette catégorie

Affiliations :
  • Laboratory of Anatomy and Physiology of Farm Animals, Department of Animal Science, Agricultural University of Athens (AUA), Iera Odos 75 str., 11855 Athens, Greece.
Publications dans "Virus maedi-visna" :

Sources (10000 au total)

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Although spending time outdoors is beneficial for development, little is known about outdoor time during infancy. The aim of this study was to assess frequencies and durations of (1a) outdoor walking ... An online survey was distributed among mothers of 0- to 12-month-old infants. Initially, 1453 mothers were recruited, of which 1275 were included in the analyses. With respect to (1a) the outcomes of ... Mother-infant dyads engaged in walks for a total weekly duration of 201 min, for approximately one to three walks over weekdays (Monday through Friday), as well as one to three walks on the weekend. T... We identified associations of infant, maternal and environmental characteristics with outdoor time spent during infancy. These results lay the foundation for future research on the effects of the outd...

Bowel habits in healthy infants and the prevalence of functional constipation, infant colic and infant dyschezia.

During infancy bowel habits change. Most infants with gastrointestinal problems have a functional gastrointestinal disorder (FGID), a major reason for visiting paediatricians. This study aims to provi... This prospective observational birth-cohort study enrolled 122 healthy full-term infants. Questionnaires were completed at 2 weeks and 2, 6 and 12 months.... Stool frequency decreased with age and consistency changed, with fewer runny stools. At 2 weeks, 24.3% had at least one of the studied FGID. FC was found in 2.6%-14.3% (up to 12 months), IC was found ... Data on bowel habits and the prevalence of FC, IC and ID are presented. FGID during infancy is common and affects children's well-being, while their families need support and advice....

Predictive value of the test of infant motor performance and the Hammersmith infant neurological examination for cerebral palsy in infants.

Current recommendations for early detection tools for cerebral palsy (CP) include assessments that vary in feasibility and resource requirements. The predictive value of less resource-intensive tools ... To determine the predictive value of the Test of Infant Motor Performance (TIMP) at 3-4 months corrected age (CA) for CP, and whether administration of both the TIMP and the Hammersmith Infant Neurolo... Five-year retrospective observational study of infants who received the TIMP and the HINE at 3-4 months CA in a high-risk follow-up clinic. TIMP and HINE cut-off scores (alone and in combination) were... Of patients with HINE scores (n = 1389; 676 [48.7 %] female; median gestational age at birth 31 weeks [interquartile range 29-34 weeks]), 1343 had concurrent TIMP scores available.... Clinical diagnosis of CP.... HINE total score <57 had optimal CP predictive value (AUC = 0.815; 77 % sensitivity; 91 % specificity) compared to optimal TIMP cut-off (1 SD below the mean, AUC = 0.71; 52 % sensitivity; 94 % specifi... HINE total score <57 at 3-4 months CA had the best CP predictive value, confirming its value absent first-line detection tools. Concurrent administration of TIMP did not improve predictive value....